H. Lüllmann, K. Mohr, and D. Duval, Atlas de poche de pharmacologie. Paris : Flammarion médecinesciences, 2006.

F. Boureau and J. Doubrère, Universalis : DOULEUR. (page consultée le 23 juin 2012)

S. Silbernagl, F. Lang, and D. Duval, Atlas de poche de physiopathologie. Paris : Flammarion médecinesciences, 2007.

D. Bars, . Le, and J. Willer, Physiologie de la douleur, EMC - Anesth??sie-R??animation, vol.1, issue.4, pp.227-266, 2004.
DOI : 10.1016/j.emcar.2004.08.001

. Vulgaris-médical, Douleur (schéma de la modulation de la), Neurologie, Images -Encyclopédie Vulgaris-Médical. (page consultée le 26 août 2012)

B. Weill and F. Batteux, Immunopathologie et réactions inflammatoires, 2003.

B. Mazières, Guide pratique de rhumatologie, Paris : MMI, 2000.

P. Barnes and M. Larin, Nuclear Factor-??B ??? A Pivotal Transcription Factor in Chronic Inflammatory Diseases, New England Journal of Medicine, vol.336, issue.15, pp.1066-1071, 1997.
DOI : 10.1056/NEJM199704103361506

P. Mercié, M. Seigneur, and C. Bilhou-nabera, Le facteur de transcription nucl??aire ??B (NF-??B), La Revue de M??decine Interne, vol.19, issue.12, pp.945-947, 1998.
DOI : 10.1016/S0248-8663(99)80074-5

M. Boissier, D. A. Falgarone, and G. , La recherche de traitements cibl??s dans la polyarthrite rhumato??de, Revue du Rhumatisme, vol.72, issue.4, pp.346-351, 2005.
DOI : 10.1016/j.rhum.2005.02.002

P. Carli, C. Landais, and M. Aletti, Traitement actuel de la polyarthrite rhumato??de, La Revue de M??decine Interne, vol.30, issue.12, pp.1067-1079, 2009.
DOI : 10.1016/j.revmed.2009.08.002

G. Bonaterra, E. Heinrich, and O. Kelber, Anti-inflammatory effects of the willow bark extract STW 33-I (Proaktiv??) in LPS-activated human monocytes and differentiated macrophages, Phytomedicine, vol.17, issue.14, pp.1106-1113, 2010.
DOI : 10.1016/j.phymed.2010.03.022

G. Bonaterra, O. Kelber, and D. Weiser, In vitro anti-proliferative effects of the willow bark extract STW 33-I, Arzneimittelforschung, vol.60, issue.06, pp.330-335, 2010.
DOI : 10.1055/s-0031-1296296

D. Salvemini, T. Misko, and J. Masferrer, Nitric oxide activates cyclooxygenase enzymes., Proceedings of the National Academy of Sciences, vol.90, issue.15, pp.7240-7244, 1993.
DOI : 10.1073/pnas.90.15.7240

URL : http://www.pnas.org/content/90/15/7240.full.pdf

P. Trouillas, C. Calliste, and D. Allais, Antioxidant, anti-inflammatory and antiproliferative properties of sixteen water plant extracts used in the Limousin countryside as herbal teas, Food Chemistry, vol.80, issue.3, pp.399-407, 2003.
DOI : 10.1016/S0308-8146(02)00282-0

S. Halkes, C. Beukelman, and B. Kroes, In vitro immunomodulatory activity ofFilipendula ulmaria, vitro immunomodulatory activity of Filipendula ulmaria, pp.518-520, 1997.
DOI : 10.1002/(SICI)1099-1573(199711)11:7<518::AID-PTR136>3.0.CO;2-9

J. Piwowarski, A. Kiss, and M. Kozlowska-wojciechowska, Anti-hyaluronidase and anti-elastase activity screening of tannin-rich plant materials used in traditional Polish medicine for external treatment of diseases with inflammatory background, Journal of Ethnopharmacology, vol.137, issue.1, pp.937-941, 2011.
DOI : 10.1016/j.jep.2011.05.039

I. Shilova, E. Krasnov, and E. Korotkova, Antioxidant properties of extracts from the above-ground parts of Filipendula ulmaria, Pharmaceutical Chemistry Journal, vol.37, issue.9, pp.660-662, 2006.
DOI : 10.1007/s11094-006-0214-4

I. Shilova, A. Semenov, and N. Suslov, Chemical composition and biological activity of a fraction of meadowsweet extract, Pharmaceutical Chemistry Journal, vol.45, issue.4, pp.185-190, 2009.
DOI : 10.1007/s11094-009-0275-2

L. Barros, L. Cabrita, and M. Boas, Chemical, biochemical and electrochemical assays to evaluate phytochemicals and antioxidant activity of wild plants, Food Chemistry, vol.127, issue.4, pp.1600-1608, 2011.
DOI : 10.1016/j.foodchem.2011.02.024

E. E. Scientific-cooperative-on-phytotherapy, P monographs : the scientific foundation for herbal medicinal products, Exeter, U.K. European Scientific Cooperative on, 2003.

C. Declume, Anti-inflammatory evaluation op a hydroalcoholic extract op black currant leaves (Ribes nigrum), Journal of Ethnopharmacology, vol.27, issue.1-2, pp.91-98, 1989.
DOI : 10.1016/0378-8741(89)90081-0

N. Garbacki, M. Tits, and L. Angenot, Inhibitory effects of proanthocyanidins from Ribes nigrum leaves on carrageenin acute inflammatory reactions induced in rats, BMC Pharmacology, vol.4, issue.1, p.25, 2004.
DOI : 10.1186/1471-2210-4-25

N. Garbacki, M. Kinet, and B. Nusgens, Proanthocyanidins, from Ribes nigrum leaves, reduce endothelial adhesion molecules ICAM-1 and VCAM-1, Journal of Inflammation, vol.2, issue.1, p.9, 2005.
DOI : 10.1186/1476-9255-2-9

J. Tabart, T. Franck, and C. Kevers, Antioxidant and anti-inflammatory activities of Ribes nigrum extracts, Food Chemistry, vol.131, issue.4, pp.1116-1122, 2012.
DOI : 10.1016/j.foodchem.2011.09.076

I. Gulcin, O. Kufrevioglu, and M. Oktay, Antioxidant, antimicrobial, antiulcer and analgesic activities of nettle (Urtica dioica L.), Journal of Ethnopharmacology, vol.90, issue.2-3, pp.205-215, 2004.
DOI : 10.1016/j.jep.2003.09.028

J. Chrubasik, B. Roufogalis, and H. Wagner, A comprehensive review on nettle effect and efficacy profiles, Part I: Herba urticae, Phytomedicine, vol.14, issue.6, pp.423-435, 2007.
DOI : 10.1016/j.phymed.2007.03.004

C. Marrassini, C. Acevedo, and J. Mino, Evaluation of antinociceptive, antinflammatory activities and phytochemical analysis of aerial parts of Urtica urens L., Phytotherapy Research, vol.111, issue.12, pp.1807-1812, 2010.
DOI : 10.3181/00379727-111-27849

B. Obertreis, K. Giller, and T. Teucher, Antiphlogistic effects of Urtica dioica folia extract in comparison to caffeic malic acid, Arzneimittelforschung, vol.46, pp.52-56, 1996.

B. Roschek, R. Fink, and M. Mcmichael, ) affects key receptors and enzymes associated with allergic rhinitis, Phytotherapy Research, vol.53, issue.7, pp.920-926, 2009.
DOI : 10.1111/j.1398-9995.2007.01517.x

U. Harput, I. Saracoglu, and Y. Ogihara, Stimulation of lymphocyte proliferation and inhibition of nitric oxide production by aqueousUrtica dioica extract, Phytotherapy Research, vol.3, issue.4, pp.346-348, 2005.
DOI : 10.1248/bpb.20.435

T. Teucher, B. Obertreis, and T. Ruttkowski, Cytokine secretion in whole blood of healthy volunteers after oral ingestion if an Urtica dioica L leaf extract, Arzneimittelforschung, vol.46, pp.906-910, 1996.

K. Riehemann, B. Behnke, and K. Schulze-osthoff, ), an antirheumatic remedy, inhibit the proinflammatory transcription factor NF-??B, FEBS Letters, vol.361, issue.1, pp.89-94, 1999.
DOI : 10.1016/0014-5793(95)00157-5

G. Schulze-tanzil, P. Souza, . De, and B. Behnke, Effects of the antirheumatic remedy Hox alpha -a new stinging nettle leaf extract -on matrix metalloproteinases in human chondrocytes in vitro, Histol. Histopath, vol.17, pp.477-485, 2002.

I. Mahomed and J. Ojewole, Analgesic, antiinflammatory and antidiabetic properties ofHarpagophytum procumbens DC (Pedaliaceae) secondary root aqueous extract, Phytotherapy Research, vol.76, issue.12, pp.982-989, 2004.
DOI : 10.1139/y94-220

L. Grant, D. Mcbean, and L. Fyfe, A review of the biological and potential therapeutic actions ofHarpagophytum procumbens, Phytotherapy Research, vol.17, issue.3, pp.199-209, 2007.
DOI : 10.1007/BF03226378

L. Whitehouse, M. Znamirowska, and C. Paul, Devil's Claw (Harpagophytum procumbens): no evidence for anti-inflammatory activity in the treatment of arthritic disease, Can Med Assoc J, vol.129, pp.249-251, 1983.

K. Inaba, K. Murata, and S. Naruto, Inhibitory effects of devil???s claw (secondary root of Harpagophytum procumbens) extract and harpagoside on cytokine production in mouse macrophages, Journal of Natural Medicines, vol.104, issue.2, pp.219-222, 2010.
DOI : 10.1007/s11418-010-0395-8

M. Andersen, E. Santos, and M. Seabra, Evaluation of acute and chronic treatments with Harpagophytum procumbens on Freund???s adjuvant-induced arthritis in rats, Journal of Ethnopharmacology, vol.91, issue.2-3, pp.325-330, 2004.
DOI : 10.1016/j.jep.2004.01.003

J. Kundu, K. Mossanda, and H. Na, Inhibitory effects of the extracts of Sutherlandia frutescens (L.) R. Br. and Harpagophytum procumbens DC. on phorbol ester-induced COX-2 expression in mouse skin: AP-1 and CREB as potential upstream targets, Cancer Letters, vol.218, issue.1, pp.21-31, 2005.
DOI : 10.1016/j.canlet.2004.07.029

M. Jang, S. Lim, and S. Han, Harpagophytum procumbens Suppresses Lipopolysaccharide-Stimulated Expressions of Cyclooxygenase-2 and Inducible Nitric Oxide Synthase in Fibroblast Cell Line L929, Journal of Pharmacological Sciences, vol.93, issue.3, pp.367-371, 2003.
DOI : 10.1254/jphs.93.367

D. Loew, J. Mollerfeld, and A. Schrodter, Investigations on the pharmacokinetic properties of Harpagophytum extracts and their effects on eicosanoid biosynthesis in vitro and ex vivo, Clinical Pharmacology & Therapeutics, vol.69, issue.5, pp.356-364, 2001.
DOI : 10.1067/mcp.2001.115445

M. Anauate, L. Torres, and S. Verissimo-de-mello, Effect of isolated fractions of Harpagophytum procumbens D.C. (devil's claw) on COX-1, COX-2 activity and nitric oxide production on whole-blood assay, Phytotherapy Research, vol.609, issue.9, pp.1365-1369, 2010.
DOI : 10.1016/S0944-7113(00)80001-X

T. Huang, V. Tran, and R. Duke, Harpagoside suppresses lipopolysaccharide-induced iNOS and COX-2 expression through inhibition of NF-??B activation, Journal of Ethnopharmacology, vol.104, issue.1-2, pp.149-155, 2006.
DOI : 10.1016/j.jep.2005.08.055

N. Abdelouahab and C. Heard, (Devil???s Claw) on Epidermal Cyclooxygenase-2 (COX-2) in Vitro, Journal of Natural Products, vol.71, issue.5, pp.746-749, 2008.
DOI : 10.1021/np070204u

M. Kaszkin, K. Beck, and E. Koch, Downregulation of iNOS expression in rat mesangial cells by special extracts of Harpagophytum procumbens derives from harpagoside-dependent and independent effects, Phytomedicine, vol.11, issue.7-8, pp.585-595, 2004.
DOI : 10.1016/j.phymed.2004.02.003

B. Fiebich, M. Heinrich, and K. Hiller, Inhibition of TNF-?? synthesis in LPS-stimulated primary human monocytes by Harpagophytum extract SteiHap 69, Phytomedicine, vol.8, issue.1, pp.28-30, 2001.
DOI : 10.1078/0944-7113-00002

K. Boje, M. Lechtenberg, and A. Nahrstedt, New and known iridoid-and phenylethanoid glycosides from Harpagophytum procumbens and their in vitro inhibition of human leukocyte elastase, Planta Med, vol.69, pp.820-825, 2003.

K. Kim, C. Jeong, and K. Park, Anti-Inflammatory Effects of Licorice and Roasted Licorice Extracts on TPA-Induced Acute Inflammation and Collagen-Induced Arthritis in Mice, Journal of Biomedicine and Biotechnology, vol.60, issue.18, 2010.
DOI : 10.1016/0076-6879(90)86093-B

J. Jurenka, Anti-inflammatory properties of curcumin, a major constituent of Curcuma longa: a review of preclinical and clinical research, Altern Med Rev, vol.14, pp.141-153, 2009.

K. Chun, Y. Keum, and S. Han, Curcumin inhibits phorbol ester-induced expression of cyclooxygenase-2 in mouse skin through suppression of extracellular signal-regulated kinase activity and NF-??B activation, Carcinogenesis, vol.24, issue.9, pp.1515-1524, 2003.
DOI : 10.1093/carcin/bgg107

J. Funk, J. Frye, and J. Oyarzo, Efficacy and mechanism of action of turmeric supplements in the treatment of experimental arthritis, Arthritis & Rheumatism, vol.106, issue.11, pp.3452-3464, 2006.
DOI : 10.1016/S0002-9440(10)62957-4

K. Kim, E. Lee, and J. Park, Curcumin Attenuates TNF-??-induced Expression of Intercellular Adhesion Molecule-1, Vascular Cell Adhesion Molecule-1 and Proinflammatory Cytokines in Human Endometriotic Stromal Cells, Phytotherapy Research, vol.27, issue.7, pp.1037-1047, 2012.
DOI : 10.1016/S0015-0282(16)55976-7

B. Aggarwal and B. Sung, Pharmacological basis for the role of curcumin in chronic diseases: an age-old spice with modern targets, Trends in Pharmacological Sciences, vol.30, issue.2, pp.85-94, 2009.
DOI : 10.1016/j.tips.2008.11.002

B. Schmid, R. Ludtke, and H. Selbmann, Efficacy and tolerability of a standardized willow bark extract in patients with osteoarthritis: randomized placebo-controlled, double blind clinical trial, Phytotherapy Research, vol.8, issue.(Suppl. 27), pp.314-320, 2000.
DOI : 10.1098/rstl.1763.0033

B. Schmid, I. Kotter, and H. L. , Pharmacokinetics of salicin after oral administration of a standardised willow bark extract, European Journal of Clinical Pharmacology, vol.57, issue.5, pp.387-391, 2001.
DOI : 10.1007/s002280100325

C. Biegert, I. Wagner, and R. Lüdtke, Efficacy and safety of willow bark extract in the treatment of osteoarthritis and rheumatoid arthritis: results of 2 randomized double-blind controlled trials, J. Rheumatol, vol.31, pp.2121-2130, 2004.

A. Beer and T. Wegener, Willow bark extract (Salicis cortex) for gonarthrosis and coxarthrosis ??? Results of a cohort study with a control group, Phytomedicine, vol.15, issue.11, pp.907-913, 2008.
DOI : 10.1016/j.phymed.2008.07.010

L. Long, K. Soeken, and E. Ernst, Herbal medicines for the treatment of osteoarthritis: a systematic review, Rheumatology, vol.40, issue.7, pp.779-793, 2001.
DOI : 10.1016/S0140-6736(00)02649-0

J. Chrubasik, B. Roufogalis, and S. Chrubasik, Evidence of effectiveness of herbal antiinflammatory drugs in the treatment of painful osteoarthritis and chronic low back pain, Phytotherapy Research, vol.39, issue.7, pp.675-683, 2007.
DOI : 10.7326/0003-4819-119-9-199311010-00001

M. Cameron, J. Gagnier, and C. Little, Evidence of Effectiveness of Herbal Medicinal Products in the Treatment of Arthritis, Phytotherapy Research, vol.17, issue.11, pp.1497-1515, 2009.
DOI : 10.4049/jimmunol.176.5.3127

S. Chrubasik, E. Eisenberg, and E. Balan, Treatment of low back pain exacerbations with willow bark extract: a randomized double-blind study, The American Journal of Medicine, vol.109, issue.1, pp.9-14, 2000.
DOI : 10.1016/S0002-9343(00)00442-3

S. Chrubasik, O. Kunzel, and A. Model, Treatment of low back pain with a herbal or synthetic anti-rheumatic: a randomized controlled study. Willow bark extract for low back pain, Rheumatology, vol.40, issue.12, pp.1388-1393, 2001.
DOI : 10.1093/rheumatology/40.12.1388

S. Chrubasik, O. Kunzel, and A. Black, Potential economic impact of using a proprietary willow bark extract in outpatient treatment of low back pain:An open non-randomized study, Phytomedicine, vol.8, issue.4, pp.241-251, 2001.
DOI : 10.1078/0944-7113-00048

J. Gagnier, M. Tulder, . Van, and B. Berman, Herbal Medicine for Low Back Pain, Spine, vol.32, issue.1, pp.82-92, 2007.
DOI : 10.1097/01.brs.0000249525.70011.fe

S. Chrubasik, W. Enderlein, and R. Bauer, Evidence for antirheumatic effectiveness of Herba Urticae dioicae in acute arthritis: A pilot study, Phytomedicine, vol.4, issue.2, pp.105-108, 1997.
DOI : 10.1016/S0944-7113(97)80052-9

K. Gundermann and J. Müller, Phytodolor?? ??? Einfl??sse und Wirksamkeit eines pflanzlichen Arzneimittels, Wiener Medizinische Wochenschrift, vol.26, issue.8, pp.343-347, 2007.
DOI : 10.7326/0003-4819-131-6-199909210-00003

P. Chantre, A. Cappelaere, and D. Leblan, Efficacy and tolerance of Harpagophytum procumbens versus diacerhein in treatment of osteoarthritis, Phytomedicine, vol.7, issue.3, pp.177-183, 2000.
DOI : 10.1016/S0944-7113(00)80001-X

M. Warnock, D. Mcbean, and A. Suter, Effectiveness and safety of Devil's Claw tablets in patients with general rheumatic disorders, Phytotherapy Research, vol.29, issue.12, pp.1228-1233, 2007.
DOI : 10.5414/CPP38015

T. Wegener and N. Lupke, DC.), Phytotherapy Research, vol.160, issue.Suppl. 1, pp.1165-1172, 2003.
DOI : 10.1001/archinte.160.19.2947

J. Gagnier, S. Chrubasik, and E. Manheimer, Harpgophytum procumbens for osteoarthritis and low back pain: A systematic review, BMC Complementary and Alternative Medicine, vol.69, issue.5, p.13, 2004.
DOI : 10.1067/mcp.2001.115445

S. Chrubasik, C. Zimpfer, and U. Schutt, Effectiveness of Harpagophytum procumbens in treatment of acute low back pain, Phytomedicine, vol.3, issue.1, pp.1-10, 1996.
DOI : 10.1016/S0944-7113(96)80003-1

S. Chrubasik, A. Model, and A. Black, A randomized double-blind pilot study comparing Doloteffin(R) and Vioxx(R) in the treatment of low back pain, Rheumatology, vol.42, issue.1, pp.141-148, 2003.
DOI : 10.1093/rheumatology/keg053

S. Chrubasik, O. Künzel, and J. Thanner, A 1-year follow-up after a pilot study with Doloteffin?? for low back pain, Phytomedicine, vol.12, issue.1-2, pp.1-9, 2005.
DOI : 10.1016/j.phymed.2004.01.005

D. Laudahn and A. Walper, Efficacy and tolerance of Harpagophytum extract LI 174 in patients with chronic non-radicular back pain, Phytotherapy Research, vol.2, issue.7, pp.621-624, 2001.
DOI : 10.1016/0304-3959(94)90007-8

S. Rubinstein, M. Middelkoop, . Van, and T. Kuijpers, A systematic review on the effectiveness of complementary and alternative medicine for chronic non-specific low-back pain, European Spine Journal, vol.9, issue.4, pp.1213-1228, 2010.
DOI : 10.1007/s00586-005-1048-6

. Solllliol1-À-e and . Wminer, A 1 g de reu illl! de rrêne pulvén:,éc

R. Chauffc, lcn :lgltllnt à40 toC pèndanl 10 min . Fihrl"l

. Snltlflon, Soluti on d'acide l'hlorog~niquc R tt 0. 1 pour oeil! fil \ ' dam le méthanol R

>. .. Dèpo and . Éparemcm, l1 de dl;1cun~ ciel> solu- 110m. tl!molOl, et 10 pl de la soiluion à eXllminer. Développez !'!Ur un par· cours de 10 cm aVèC un mélange de 10 volume .. d'acide formique anhydre R. de 10 volumes d 'eau el de gO volum~s d'ilCél:llc d'élhyh.' R. Laissez sécher la plaque à l'air. Pulvérbez un~ sol ution de diph~nynx,· raie d'uillinoéthanoi R à 1 pour cent mlV el de polyélhylènegl)'col-tOO R :' 1 , "our l'Cnl IIIIV d~ns du méthanol R. E:c.amine.l ~n lumière ullravlu, klle ;1 365 nm. Le l:hrommogrumme obtenu livet· la solUlion i'I cxami nc.!r pr~~ente lIlle bande de Iluorc:,oence omngée 'iel'l1blablc quant li sa po~i · lion el S3 fluorescence à celle du chromalogr:.tnllne oblcnu avec la sol LIlion 1~ll1oin (a), Il pré~enlc une sucCt!ssioll de bandes de tluorescel1l:c bleue panni lesque llel> l'une eSI semblable quant à sa position ct 'i3 l1uo- rCl>ccnce li l:c lle du chromatugramme ohlenu avec la ~olution lémOIll

O. Ln-bande-principale-dê, C:)oence bleue esll>ilUée dans la pari le médiane du chromatogrammt!. au -dessus de Il.! bande corre~p(lmlani à l'acide ch lorogénique

E. Élclilculs-Étrangers, L~ t.IUX de~ déments ctnmger.., n'cslllas ..,upè· rieur il

/. Fraxil and L. Onms, À 0,1 g dc feuille de lrêne pulvérisée. ajoutC/. 100 ml d'eau bouillante. Laisse/. en COlllact pendanl 15 min _ E:\3llUnel. en lumii!re ullr~wiolelle j 365 mn. La solullon ne pré~ente pU'i de nuon

. .. Pertt-À-'la-dcs-Écréteu, Délenninée à l' ét uve à 100-105 oC sur 1,000 g de feuille de frêne pulvérisée (355). la pcrte à la dessiccation n ' c~1 pa:. ~upéneure à 12.0 pour cent. FRENE \FEUILLI! DEI épide lme inférieur siomalilère : quelques poils tec teur:). unicelluhures uu pluricelluhtires. à ex trémih~ conique: de ran! ~ poih, des Imgmcllt!o de l1\ ::r· vun

C. Opérc, parchromatogr:.tphi\! 'iur couche min('\! (V .6.20.2) en utili salll une plaque reCOuvel1e d'ull gel de silice approprié

$. Olllliol1-À-e and . Wminer, A 1 g dc reu ille de rrêne pulvénsée (355). ajoute/ 20 ml de mélhnnol R. Chauffc.lcn, pp.1-40

>. D~po, 11 de ch,-lcune d\!l> !\olu· l iOn-. témOin' et 10 pl de la solluion à eXllminer. Développez ~ur Uil par· CI.)Uh de 10 cm avec un m élange de 10 volume .. d'acide forml{llIe anhydre R, de 10 volumes d'eau et de gO volum~s d'ilCétate d't!lhyll' R, Lai ssez sécher la plaque à l'air. Pulvéril>ez un~ sol ution de diph~nynx,· raIe d'ulllinoéthanol R à 1 pour cent mlV el de polyélhylènegl)'col

. Ln-bande-principale-dê-nuoi, C:)oence bleue e~ll>ituée dans la panic média· ne du chromatogrammt!. au -dessus de Il.! bande COrrt:~p(lndant à l'acide ch lorogénique

E. Élclilclils-Étrangers, Le t.IUX de!> déments ctnmger.., n·esillil.~ ..,u~ · rieur il

/. Fraxil and L. Onms, À 0,1 g dc fcuille dl! Irêne pulvérisée. ajoutCl. 100 ml d'eau bouillante. Lais~e/. en COlllaCI pendnnl 15 min. Exal1unel. en lumii!re ullr~lViolelie J 365 IlIn, La solullon ne pré~enle pU'i de nuon

. Pertt, iicc3tion (V,n.22) Oélenninée à l'étuve à 100·105 oC sur 1.000 g de reuille de frêne pulvérisée (355), la perte il

C. Dan, introduisez 2 g d'harpagophyton pulvérisé cliO ml d'eau. Chauffe7 il ébullillon, Filtrez, Dans un tube à essai plong.E dans la gl~lèe fondante, Introduisez 1 ml du nltrat, 1 ml de so lUlion de vamlline. R fi 5 pour cenl mil' dam un mélange de 20 volumes de mélhânol R CI de 1<0

E. Éhhll, Le ',lUX des élémcnl.:S éu-angers n'est pa.l> supérieur à 2,0 pour cenl Indh:e de J.;onllement (V.4Al. L'indice de gont1ement de l'harpagophyton pulvén.l>é n'est pas infcneur à 8, Chroma tographie, Opérez par chromatographie sur couche mince (V.6.20.2) en UliiisRIlI une plaque recouvenc de gel de silice Gl'll-I R

C. Li and . Sou, agit:ltlon pendant 30 mIR. Lais~eL refroidir. Filtre

S. /. Lliu, eL M!parément :,ur la plaque JO ~ll de chacune des >.;o l ution~ Dévelop· pa sur un parcours de 12 cm avec un mélange de 10 volumes d'acide aoelique R, tle 10 volume~ d'eau et de 40 volumc:, de butanol R, LaÎsscL séchl! r 11.1 plaqut: à l'air. Eumlllt:L en lumière ultravÎolcne à 25-l nm. Il apparaÎI u-ois tllche:, d'atténuation de lluore:.cence dont une est semblable ljuant ù ioa I){)silion et son allénuation de fluorcscenct

R. Su-lfurique, Chauffe7 la plaque à 110 oC pendan t 5 min. Examlncz i ' !. la lumil!re du jour. Le chromatogramme oblenu avec la solution à examihcr présenle lrois laches rose violacé donl une eSI ~cmb labl e quant ù :.a I>osillon el sa coloration à \

I. Arpagopiiyton, D. A. Tion, and . L-'harpagophyton, en éve ntail ou en roue lles, pré!ocnlc lel'> caraclère!\ rnac ro:Sl:opiques précédemment d éc rit ~

C. Un-iube-À-essa-i, introduisez 2 g d'harpagophylon pulvéri sé ClI O ml d'eau. Chauffe7 il ébullition, Fi ltrez, Dans un tube à essai plongé dans la gl:lce ronda nte, Introduisez 1 ml du nltrat, 1 ml de su lUl ion de vamlline. R fi 5 pour cent mlV dans un mélange de 20, lcide sul furiqUe! R, Il se développe une colural ion rose à viol~ lI c

E. Élélll, Le tilUX des é lémenl.~ éLJ.tngcrs n'est pa.l > supérieur à 2,0 pour eenL Indh:e de !;onllement (V.4,.n. L'ind ice de gontlcl11en

. Chroma-tographie, Opérez par chromalOgraphieur couche mince (V.6.20.2) en ulilisalll une plaque recouvenc de gel de si lice Gl'lS-I R

/. So, Û. , /. 1u-!-r, and . Dan, une fiole à col rodé de 50 ml. inlrod uiscz 2,0 g ù'harpagophyl on pul vé ri s~

S. /. Lliu, Développa sur un parcours de 12 cm avec un mélange de 10 volumes ô'acide: aoetique R, tle 10 vol ume, d'eau et de 40 volumclo de bUianol R, l'':II SSCL sét:hcr 11. 1 plaqut: à l'air. EumllleL en lumière uhravÎolcne à 254 !lm. Il appamÎt trois tnchclo ù'311énuation de lluore:-ocence dont une est semblable ljuan t il 10a I){)sition et son auénuali on de fluorescenc..: il la Lache princ ipale du chromatogramme obtenu aveç la so lullon télllam, Pulvérisez du ré'lclir à la v;ulIlllllC sulfurique R, ChaulTe7 la plaque à 110 oC pendan t 5 min, EXaJllInct i ' !. la l umière du jour. Le chromatogramme obtenu avec la solution à cxamihcr présente l ro is taches rose violacé donl une eSI :-.cmblable quant à :-ou 1>O~ lll on et sa coloration à lil tache principale du chromalogmmmc obtenu avc.!!C la l'lot ution témoin

. Perte-À-la-dessiccation, 22) Détenninée à l'étuve il. 100-105 oc. sur 1.00 g d'harpagophyton pul véri sé, la perte à la dessiccati on n 'est pa~ supéri eure à 10

1. Mai, Oéll!nllinée il l'étuve il 100· 105 oC, sur 1.00 g d'harpagophyton pulvéri ... é, la pt!rtc à la de. ... siccalion n'e!<.t pa~ s upé· ricure:i 10,0 pour cent Cendres tol ~l lc s (V,3,2, 16) Déterminé sur 1.00 g d'Imrpagophylon pulvé· nsé